甲氧芐氨嘧啶檢測試劑盒（酶聯(lián)**法）

1 原理及用途
本試劑盒采用競爭ELISA方法檢測組織、飼料、尿樣和血清等樣品中的甲氧芐氨嘧啶（Trimethoprim，TMP），試劑盒由預(yù)包被甲氧芐氨嘧啶抗體的酶標(biāo)板、TMP酶標(biāo)記物、標(biāo)準(zhǔn)品及其他配套試劑組成。檢測時(shí)，加入標(biāo)準(zhǔn)品或樣品溶液，樣本中的甲氧芐氨嘧啶和TMP酶標(biāo)記物競爭酶標(biāo)板上預(yù)包被的甲氧芐氨嘧啶抗體，用TMB底物顯色后，樣本吸光度值與樣本甲氧芐氨嘧啶含量成負(fù)相關(guān)，與標(biāo)準(zhǔn)曲線比較即可得出樣本中甲氧芐氨嘧啶的殘留量。
2 技術(shù)指標(biāo)
2.1 試劑盒靈敏度：0.015ppb(ng/ml)
2.2 反應(yīng)模式：37℃，45min～15min
2.3 檢測下限：
飼料……………………………………0.8ppb
組織（魚/蝦/肉/肝臟/腎臟）………0.2ppb
血清/尿液/血漿………………………0.2ppb
2.4 交叉反應(yīng)率：
甲氧芐氨嘧啶…………………………100%
磺胺吡啶……………………………<0.1%
磺胺…………………………………<0.1%
磺胺嘧啶……………………………<0.1%
磺胺異噁唑…………………………<0.1%
磺胺噻唑……………………………<0.1%
磺胺甲基嘧啶………………………<0.1%
磺胺多辛……………………………<0.1%
 2.5 樣本回收率：
飼料……………………85%±10%
組織（魚/蝦/肉/肝臟/腎臟）………85±15%
血清/尿液/血漿………………………85±10%

甲氧芐氨嘧啶檢測試劑盒【試劑盒組成】 

甲氧芐氨嘧啶檢測試劑盒4 需要的器材和試劑
4.1 儀器：酶標(biāo)儀、打印機(jī)、均質(zhì)器 、氮?dú)獯蹈裳b置、振蕩器、離心機(jī)、刻度移液管、天平（感量0.01g）
4.2 微量移液器：單道20μl-200μl，100μl-1000μl、多道300μl
4.3 試劑：無水甲醇、正己烷、鹽酸、氫氧化鈉
5 樣本前處理
5.1 樣本處理前須知：
實(shí)驗(yàn)器具必須潔凈并使用一次性吸頭，以避免污染干擾實(shí)驗(yàn)結(jié)果。
5.2 配液：
配液1：1×復(fù)溶液
    將2×復(fù)溶液用去離子水2倍稀釋。
配液2：0.1M鹽酸
    取濃鹽酸10ml加入到1200ml離子水中。
配液3：1M氫氧化鈉
    取氫氧化鈉4g加入到100ml離子水中。
5.3 樣本前處理步驟：
5.3.1 飼料處理方法 
甲氧芐氨嘧啶檢測試劑盒1）稱取2g粉碎樣品于50ml離心管中，加20ml 0.1M鹽酸，振蕩15分鐘，室溫3000轉(zhuǎn)/分離心10分鐘；
2）取1ml上清到1.5ml離心管，加入55ul 1M氫氧化鈉調(diào)節(jié)PH值到6-8，混勻（針對(duì)不同的飼料樣品可以調(diào)節(jié)1M氫氧化鈉的用量），室溫3000轉(zhuǎn)/分離心10分鐘；
3）取0.5ml上清到另一1.5ml離心管，加入0.5ml的1×復(fù)溶液，混勻；
3）取50μl進(jìn)行分析。
    樣本稀釋倍數(shù)：20    檢測下限：0.8ppb
5.3.2 組織（魚/蝦/肉/肝臟/腎臟）處理方法 
1）取除去脂肪的勻漿組織2g于50ml離心管中，加入6 ml無水甲醇和2ml正己烷，*大速度渦旋振蕩5分鐘；
2）室溫4000轉(zhuǎn)/分離心10分鐘，去除上層正己烷層，移取0.5ml下層清液到潔凈玻璃試管試管（避免觸碰脂肪層）；
3）在50-60℃下氮?dú)獯蹈苫蛘舾蓸悠罚?br> 4）加入400ul的1×復(fù)溶液和500ul正己烷，*大速度渦旋振蕩1分鐘；
5）轉(zhuǎn)入1.5ml離心管，室溫4000轉(zhuǎn)/分離心5分鐘，去除上層正己烷層，移取50ul下層清液進(jìn)行分析。
    樣本稀釋倍數(shù)：5    檢測下限：0.2ppb
5.3.3 尿液/血清/血漿處理方法
1）取0.5 ml 樣品，室溫4000轉(zhuǎn)/分離心5分鐘；
2）取50μl上清液，加入200μl 1×復(fù)溶液，混勻；
3）取50μl用于檢測。
    樣本稀釋倍數(shù)：5    檢測下限：0.2ppb
（如果需要，可以加大1×復(fù)溶液的用量來加大稀釋倍數(shù)）
6 酶聯(lián)**試驗(yàn)步驟
    將所需試劑從4℃冷藏環(huán)境中取出，置于室溫平衡30min以上, 洗滌液冷藏時(shí)可能會(huì)有結(jié)晶需恢復(fù)到室溫以充分溶解，每種液體試劑使用前均須搖勻。取出需要數(shù)量的微孔板及框架，將不用的微孔板放入自封袋，保存于2-8℃。
實(shí)驗(yàn)開始前，用去離子水將20×濃縮洗滌液按20倍稀釋成工作洗滌液。
6.1 編    號(hào)：將樣本和標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)應(yīng)微孔按序編號(hào)，每個(gè)樣本和標(biāo)準(zhǔn)品做2孔平行，并記錄標(biāo)準(zhǔn)孔和樣本孔所在的位置。
6.2 加樣反應(yīng)：加標(biāo)準(zhǔn)品或樣本50μl/孔到各自的微孔中，然后加酶標(biāo)記物50μl/孔，用蓋板膜封板，輕輕振蕩5秒混勻，37℃反應(yīng)45分鐘。
6.3 洗    滌：小心揭開蓋板膜，將孔內(nèi)液體甩干，用工作洗滌液250μl/孔充分洗滌5次，每次間隔30秒，用吸水紙拍干（拍干后未被**的氣泡可用干凈的槍頭刺破）。
6.4 顯    色：每孔加入底物液A 50μl，再加底物液B 50μl，輕輕振蕩5秒混勻，37℃避光顯色15分鐘。
6.5 終    止：每孔加入終止液50μl，輕輕振蕩混勻，終止反應(yīng)。
6.6 測吸光值：用酶標(biāo)儀于450nm處測定每孔吸光度值（建議用雙波長450/630nm）。測定應(yīng)在終止反應(yīng)后10分鐘內(nèi)完成。
7 結(jié)果分析
7.1 百分吸光率的計(jì)算
    標(biāo)準(zhǔn)液或樣本的百分吸光率等于標(biāo)準(zhǔn)液或樣本的百分吸光度值的平均值（雙孔）除以**個(gè)標(biāo)準(zhǔn)液（0ppb）的吸光度值，再乘以100%，即
 百分吸光度值（%）＝
A
×100%
A0
甲氧芐氨嘧啶檢測試劑盒A—標(biāo)準(zhǔn)溶液或樣本溶液的平均吸光度值
A0—0ppb標(biāo)準(zhǔn)溶液的平均吸光度值
7.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制與計(jì)算
    以標(biāo)準(zhǔn)液百分吸光率為縱坐標(biāo)，對(duì)應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)液濃度（ppb）的對(duì)數(shù)為橫坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)液的半對(duì)數(shù)曲線圖。將樣本的百分吸光率代入標(biāo)準(zhǔn)曲線中，從標(biāo)準(zhǔn)曲線上讀出樣本所對(duì)應(yīng)的濃度，乘以其對(duì)應(yīng)的稀釋倍數(shù)即為樣本中待測物的實(shí)際濃度。
    若利用試劑盒專業(yè)分析軟件進(jìn)行計(jì)算，更便于大量樣本的準(zhǔn)確、快速分析。（歡迎來電索取）
8 注意事項(xiàng)
8.1 室溫低于25℃或試劑及樣本沒有回到室溫（25℃）會(huì)導(dǎo)致所有標(biāo)準(zhǔn)的OD值偏低。
8.2 在洗板過程中如果出現(xiàn)板孔干燥的情況，則會(huì)出現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)曲線不成線性，重復(fù)性不好的現(xiàn)象。所以洗板拍干后應(yīng)立即進(jìn)行下一步操作。
8.3 混合要均勻，洗板要徹底，在ELISA分析中的再現(xiàn)性，很大程度上取決于洗板的一致性。
8.4 在所有孵育過程中，用蓋板膜封住微孔板，避免光線照射。
8.5 不要使用過了有效期的試劑盒，不要交換使用不同批號(hào)試劑盒中的試劑。
8.6 顯色液若有任何顏色表明變質(zhì)，應(yīng)當(dāng)棄之。0標(biāo)準(zhǔn)的吸光度值小于0.5個(gè)單位（A450nm< 0.5 ）時(shí)，表示試劑可能變質(zhì)。
8.7 反應(yīng)終止液有腐蝕性，避免接觸皮膚。
9 貯藏及保存期
儲(chǔ)藏條件：試劑盒于2-8℃保存，避免冷凍。
保 質(zhì) 期：該產(chǎn)品有效期為1年，生產(chǎn)日期見包裝盒。